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上海恒遠技術人員與您一起探討正確提取植物組織蛋白質方法
更新時間:2022-04-28 點擊次數:1126

一、植物根中蛋白質的抽取

1.  sample,液氮研磨

2.  裝1.5 ml centrifuge 用tube

3.  加 1 M KH2PO4+K2HPO4 700 μl

4.  12000 rpm,4度,10-15minite

5.  取上層液,蛋白質就在里面

二、蛋白質樣品制備

秧苗蛋白質樣品的提取按Davermal等(1986)的方法進行。100 mg材料剪碎后加入10 mgPVP-40(聚乙烯吡咯烷酮)及少量石英砂,用液氮研磨成粉,加入1.5 ml 10% (丙酮配制,含10 mM即0.07% β-巰基乙醇),混勻,-20 ℃沉淀1小時,4 ℃,15000 r/min離心15 min,棄上清,沉淀復溶于1.5 ml冷丙酮(含10 mM β-巰基乙醇),再于-20 ℃沉淀1小時,同上離心棄上清,(有必要再用80%丙酮(含10 mMβ-巰基乙醇所得沉淀低溫冷凍真空抽干。按每mg干粉加入20 μl(可調)UKS液[9.5 M尿素,5 mM碳酸鉀,1.25%SDS,0.5%DTT(二硫蘇糖醇),2% Ampholine (Amersham Pharmacia Biotech Inc,pH3.5-10),6% Triton X-100],37 ℃溫育30min,期間攪動幾次,28度 (溫度低,高濃度的尿素會讓溶液結冰)16000 r/min離心15 min,離心力越大時間長一點越好!上清即可上樣電泳。或者-70度保存。

三、組織:腸黏膜

目的:WESTERN BLOT檢測凋亡相關蛋白的表達應用TRIPURE提取蛋白質步驟:含蛋白質上清液中加入異丙醇:(1.5 ml每1 mlTRIPURE用量)倒轉混勻,置室溫10 min 離心:12000 g,10 min,4度,棄上清加入0.3 M鹽酸胍/95%乙醇:(2 ml每1 mlTRIPURE用量)振蕩,置室溫20 min 離心: 7500 g,5 min,4度,棄上清重復0.3 M鹽酸胍/95%乙醇步2次沉淀中加入*乙醇 2 ml 充分振蕩混勻,置室溫20 min 離心: 7500 g,5 min,4度,棄上清吹干沉淀 1%SDS溶解沉淀離心:10000 g,10 min,4度取上清-20度保存(或可直接用于WESTERN BLOT)存在的問題:加入1%SDS后沉淀不溶解,還是很大的一塊,4度離心后又多了白色沉定,SDS結晶測濃度,含量才1 mg/ml左右。解決:提蛋白試劑盒,另外組織大小適中,要碎,立即加2X BUFFER,然后煮5-10分鐘,效果很好的。

四、植物組織蛋白質提取方法 三氯醋酸—丙酮沉淀法

1.  在液氮中研磨葉片

2.  加入樣品體積3倍的提取液在-20 ℃的條件下放置一晚,然后離心(4 ℃ 8000 rpm以上1小時)棄上清。

3.  加入等體積的冰浴丙酮(含0.07%的β-巰基乙醇),搖勻后離心(4 ℃ 8000 rpm以上1小時),然后真空干燥沉淀,備用。

4.  上樣前加入裂解液,室溫放置30分鐘,使蛋白充分溶于裂解液中,然后離心(15 ℃ 8000 rpm以上1小時或更長時間以沒有沉淀為標準),可臨時保存在4 ℃待用。

5.  用Brandford法定量蛋白,然后可分裝放入-80 ℃備用。藥品:提取液:含10%TCA和0.07%的β-巰基乙醇的丙酮裂解液:2.7 g尿素0.2 g CHAPS溶于3 ml滅菌的去離子水中(終體積為5 ml),使用前再加入1 M的DTT65 μl/ml。這種方法針對雙向電泳,雜質少,離子濃度小的特點!當然單向電泳也同樣適用,只是電泳的條帶會減少!

五、植物材料:水稻苗,葉鞘,根

1.  200毫克樣品置于冰上磨碎

2.  加lysis buffer,離心,10000 rpm,4度,5 min取上清

3.  重復離心5 min

4.  lysis buffer:urea np-40 ampholine 2-me pvp-40

六、植物組織蛋白質提取方法 

1.  
根據樣品重量(1 g樣品加入3.5 ml提取液,可根據材料不同適當加入),準備提取液放在冰上。 

2.  把樣品放在研缽中用液氮研磨,研磨后加入提取液中在冰上靜置(3-4小時)。 

3.  用離心機離心8000 rpm 40 min 4 ℃或11100 rpm 20 min 4 ℃ 

4.  提取上清夜,樣品制備完成。蛋白質提取液:300 ml

(1)1 M tris-HCl(pH 8)45 ml

(2)咁油(Glycerol)75 ml

(3)聚乙烯吡咯烷酮(Polyvinylpolypyrrordone) 6 g 這種方法針對SDS-Page,垂直板電泳

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